RSS подписка
Реклама
 
Бизнес и право » ОСНОВЫ ТОВАРОВЕДЕНИЯ » Предмет и задачи товароведения

Определение товароведения было дано К. Марксом в работе "Капитал": "Потребительные стоимости товаров составляют предмет особой дисциплины — товароведения". Следовательно, товароведение — это научная дисциплина, изучающая потребительные стоимости товаров.

Потребительную стоимость товара определяют его свойства, удовлетворяющие те или иные потребности человека.

Потребительская стоимость товаров зависит от их физических, химических, биологических и других свойств, определяющих способность товаров удовлетворять те или иные потребности человека. Потребительскую стоимость имеют все продукты труда независимо от того, являются они средством производства или предметом личного потребления.

Продовольственные товары удовлетворяют ежедневные потребности человека в питании и должны обладать вполне определенными потребительскими свойствами: калорийностью, биологической полноценностью состава, высокой усвояемостью и пищевой безвредностью, определенным цветом, вкусом и ароматом, консистенцией и другими свойствами. Совокупность свойств и характеристик, обеспечивающая удовлетворение потребностей, есть качество. Следовательно, изучение потребительских свойств товаров, качества товаров является основной задачей товароведения.

Качество продовольственных товаров при транспорти­ровании, хранении и реализации не остается без изменений, и поэтому в задачу товароведения входит изучение всех процессов, происходящих в продовольственных това­рах в эти периоды товародвижения, и нахождение оптимальных условий для максимального сохранения качества и сокращения потерь.

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 21:48 | Комментариев (0)
Агрономия » Ботаника и физиология растений » МИКРОБИОЛОГИЯ » Приготовление красителей и индикаторов

Кристаллвиолет (метиловый фиолетовый), водный раствор: метиловый   фиолетовый     кристаллический  –  7  г,     этиловый спирт

96°-ный – 100 мл, вода дистиллированная – 900 мл. Раствор устойчив.

Фуксин основной, насыщенный спиртовой раствор: фуксин основной кристаллический – 10 г, этиловый спирт 96°-ный – 100 мл. Раствор может хранится долгое время в бутылке из тёмного стекла.

Фуксин основной карболовый – фуксин Циля: фуксин основной кристаллический – 1 г, карболовая кислота (фенол) – 5 г, этиловый спирт 96°-ный – 10 мл, вода дистиллированная – 100 мл. К спиртовому раствору основного фуксина приливают 5%-ный раствор фенола (воду для его приготовления подогревают до 50°С), добавляют несколько капель глицерина. Настаивают в термостате 48 ч и фильтруют через бумажный фильтр. Раствор устойчив. Хранят в укупоренной таре.

Фуксин Пфейффера: карболовый фуксин Циля – 1мл, вода дистиллированная – 9 мл. Готовят на срок не более 10 дней.

Фуксин основной, водный раствор: фуксин основной, насыщенный спиртовой раствор – 1  мл, вода дистиллированная – 9мл. Раствор устойчив.

Метиленовый синий, насыщенный спиртовой раствор: метиленовый синий кристаллический – 10 г, этиловый спирт 96°-ный – 100 мл. Оставляют на 2-3 дня в термостате, периодически встряхивая, а затем фильтруют. Раствор устойчив.

Метиленовый синий, водный раствор: насыщенный спиртовой раствор метиленового синего – 1 мл, вода дистиллированная – 9 мл. Раствор устойчив.

Уксуснокислый синий Нейссера: готовят два раствора –

1. Метиленовый синий кристаллический – 0,1 г, этиловый спирт 96°-ный – 2 мл, уксусная кислота ледяная – 5 мл, вода дистиллированная – 100 мл;

2. Метиловый фиолетовый кристаллический – 0,1 г, этиловый спирт 96°-ный – 1 мл, вода дистиллированная – 30 мл. Перед употреблением смешивают две части первого раствора с одной частью второго. Раствор неустойчив.

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 20:58 | Комментариев (0)

Молочнокислое брожение лежит в основе квашения капусты, огурцов и др. Микробиологические процессы при этом такие же , как и при силосовании.

Выполнение. Для исследования выжимают сок из квашеных продуктов и определяют его кислотность с помощью индикаторной бумаги для определения рН силоса. Затем делают препараты-отпечатки как и при исследовании силоса. Микрофлора квашеной капусты и солёных огурцов такая же, как и в силосе.

В квашеной капусте развивается молочный стрептококк – Streptococcus lactis, капустная палочка (разновидность растительной) – Lactobacterium plantarum varbrassica и дрожжиSaccharomyces cerevisiae.

В солёных  огурцах – молочный стрептококк - Streptococcus lactis, огуречная палочка (разновидность растительной) - Lactobacterium plantarum varcucumis  и  дрожжи -Saccharomyces cerevisiae.

В более кислых продуктах больше палочковидных молочнокислых бактерий, а в менее кислых – шаровидных. Число дрожжевых клеток также может быть различным – это зависит от содержания в растениях сахара. Заполняют табл. 6.

Таблица 6

Результаты исследования квашеных продуктов

 

Название продукта

Кислотность, рН

Название микрофлоры

 

Квашеная капуста

 

 

 

 

Солёный огурец

 

 

 

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 20:58 | Комментариев (0)

Сенажирование – это способ консервирования провяленных растений, главным образом бобовых, убранных в начале стадии бутонизации. Сначала растительная масса 1-2 суток лежит в валках, а затем ее подбирают, измельчают, загружают в траншеи или башни, , уплотняют и изолируют от воздуха. Влажность сенажа (сено-силоса) составляет 40-60 %. Сохраняется под влиянием «физиологической сухости» и биохимических процессов, вызываемых микроорганизмами.

При подсушивании растений повышается осмотическое давление их клеток и водоудерживающая сила растений может превышать сосущую силу микробов. У гнилостных и маслянокислых бактерий осмотическое давление меньше, чем у молочнокислых, поэтому при подсушивании растительной массы гнилостные и маслянокислые бактерии не развиваются, но действуют молочнокислые бактерии, которые вызывают молочнокислое брожение. Однако микробиологические процессы при сенажировании протекают медленно. Сенаж содержит в 2,4 раза меньше молочной кислоты, чем силос, нет масляной кислоты, рН сенажа составляет 4,7-5,0. Микрофлора сенажа такая же, как у силоса, но количественно микробов меньшее.

Выполнение. Для исследования сенажа определяют рН и готовят препарат-отпечаток как и при исследовании силоса.

Зарисовывают в тетради микрофлору сенажа и отмечают его кислотность.

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 20:57 | Комментариев (0)
Агрономия » Ботаника и физиология растений » МИКРОБИОЛОГИЯ » Исследование силоса, сенажа и квашеных продуктов Силос

Силосование – это способ консервирования  влажной зеленой растительной массы. Силос (от исп. silos – яма) один из древнейших видов корма. В основе силосования (заквашивания) лежит молочнокислое брожение. Силосованный корм сохраняет сочность, приобретает кислый вкус, становится более мягким, лучше поедается скотом и может храниться продолжительное время. Силос имеет влажность 70-80 %  и кислотность (рН)  4,0-4,2.

Для оценки качества силоса проводят органолептические, химические и микробиологические исследования.

К  органолептическим показателям качества силоса относятся цвет, запах, консистенция и вкус.

Цвет должен быть ближе к цвету растений, из которых приготовлен силос. Доброкачественный силос имеет оттенки зелёного, жёлто-зелёного, коричнево-зелёного цвета. У испорченного силоса преобладает тёмно-коричневый и чёрный цвет.

Запах доброкачественного силоса должен быть приятным, напоминающим запах свежеиспечённого хлеба, мочёных яблок. При порче силоса появляется запах уксуса и неприятный запах масляной кислоты.

Консистенция у доброкачественного силоса должна быть выраженной. У испорченного силоса растительная масса делается ослизнённой, листочки не отделяются друг от друга.

Вкус доброкачественного силоса слабокислый, приятный. У испорченного силоса вкус резко кислый с горьковатым привкусом.

Важнейшим химическим показателем качества силоса является его кислотность. У силоса хорошего качества рН должна быть около  4,0-4,2.

Микробиологическая оценка качества силоса проводится по его микрофлоре. В силосе хорошего качества должны быть молочнокислые бактерии и немного дрожжей, не должно быть маслянокислых, гнилостных бактерий и плесневых грибов.

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 20:57 | Комментариев (0)
Агрономия » Ботаника и физиология растений » МИКРОБИОЛОГИЯ » Клубеньковые бактерии бобовых растений

Клубеньковые бактерии относятся к симбиотическим азотфиксаторам. Они живут в клубеньках на корнях бобовых растений и способны фиксировать азот атмосферы только в таком симбиозе. Клубеньки у одних растений (горох, бобы) крупные, у других (клевер) мелкие, у некоторых могут иметь вид больших бородавчатых наростов на главном корне (люпин).

Клубеньковые бактерии характеризуются специфичностью – заражают только определенные виды бобовых растений; вирулентностью – проникают в ткань корня, где размножаются и вызывают образование клубеньков; активностью – способны использовать молекулярный азот.

Наиболее энергично процесс усвоения азота в клубеньках отмечается в фазе бутонизации и цветения бобовых, когда клубеньковые бактерии принимают форму бактероидов. Однолетние бобовые растения способны в симбиозе с клубеньковыми бактериями накапливать за вегетационный период на 1 га от 50 до 100 кг азота, а многолетние –  150-300 кг.

Микроскопирование. Для знакомства с клубеньковыми бактериями готовят препараты-отпечатки или мазки из клубеньков бобовых растений. Для этого отделяют клубеньки от корней, помещают на предметное стекло и другим предметным стеклом раздавливают и размазывают по поверхности. У люпина надрезают нарост на корне и делают мазок обнажённой тканью. Фиксируют в пламени, окрашивают кристаллвиолетом (30-60 с), рассматривают с помощью иммерсионной системы. В препаратах отыскивают мелкие, неспоровые палочки и крупные бактероиды.

Клубеньковые бактерии относятся к роду Rhizobium. В клубеньках люпина развиваются Rhizobium lupini, клевера – Rhizobium trifolii, гороха и бобов – Rhizobium leguminosarum.

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 20:55 | Комментариев (0)
Агрономия » Ботаника и физиология растений » МИКРОБИОЛОГИЯ » Свободноживущие азотфиксирующие микроорганизмы

Микроорганизмы, обитающие в почве самостоятельно и способные использовать молекулярный азот атмосферы для построения своего органического вещества, называются свободноживущими азотфиксаторами. После их отмирания в почве происходит минерализация органического азота до аммиака, доступного для питания растений. Масштабы поступления биологического азота в почву за счёт деятельности свободноживущих в ней азотфиксаторов значительны и могут составлять 15-50 кг азота на гектар и более.

Свободноживущие азотфиксирующие микроорганизмы делятся на анаэробные и аэробные.

1Аэробный свободноживущий азотфиксатор Clostridium pasteurianum

Этот микроб был открыт в 1893 г. С.Н. Виноградским и назван в честь Л. Пастера. Энергию, получаемую в результате маслянокислого брожения органических форм углерода (моно-, ди- и полисахаридов), использует на связывание молекулярного азота. Азотфиксирующая способность составляет 10-12 мг азота на 1 г сброженного сахара. Эти микроорганизмы встречаются во всех почвах.

Постановка опыта. Для создания накопительной культуры Clostridium pasteurianum используют безазотистую среду Виноградского следующего состава, г: глюкоза – 20,0; К2НРО4– 1,0; MgSO4 – 0,5; NaCl – 0,5; вода дистиллированная – 1000 мл.

Среду разливают в высокие пробирки на 2/3 их объема, добавляют 0,5  г мела (для нейтрализации масляной кислоты) и заражают 1 г почвы. Пробирки закрывают ватными пробками, оборачивают пробки бумагой,  подписывают. Подготовленные  пробирки пастеризуют  при  температуре  60 °С в течение  30 мин, а затем помещают в термостат при  25-30 °С.

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 20:55 | Комментариев (0)

Денитрификация – это процесс восстановления нитратов и нитритов до молекулярного азота (N2). При этом происходит потеря почвой доступных растениям минеральных форм азота. Это явление носит отрицательный характер. Денитрификация делится на прямую, или микробиологическую – это биологическое восстановление нитратов, и косвенную, или химическую – это химическое восстановление нитратов (происходит в кислой среде).

Прямая денитрификация осуществляется денитрифицирующими бактериями и происходит в анаэробных условиях в результате их нитратного дыхания, когда микроорганизмы используют для окисления органического вещества не свободный молекулярный кислород, а при его отсутствии связанный кислород нитратов или нитритов.

Постановка опыта. Для наблюдения за процессом денитрификации готовят питательную среду следующего состава, г: сегнетовая соль (калий натрий виннокислый) - 20,0;KNO3 – 2,0; K2HPO4 – 0,5; MgSO4 – 0,1; вода дистиллированная – 1000 мл.

Среду наливают в колбу на половину её объёма, добавляют 0,5 г почвы, тщательно перемешивают для удаления пузырьков воздуха, затем наполняют колбу питательной средой до самых краёв и закрывают пробкой, в которую вставлена открытая с двух сторон стеклянная трубка, расширенная в средней части. Пробка вытесняет часть жидкости из колбы в стеклянную трубку. Наливают в трубку несколько капель вазелинового масла, чтобы создать в колбе анаэробные условия. Колбу подписывают и помещают в термостат.

Элективные условия для денитрификации:

1)  нитратная форма азота в среде;

2)  анаэробные условия;

3)  набор элементов питания для денитрифицирующих бактерий.

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 20:54 | Комментариев (0)

Нитрификация – это процесс окисления аммиака (или аммиачных форм азота) сначала в азотистую кислоту (или нитриты), а затем в азотную кислоту (или нитраты). Этот процесс идет в две фазы:

I  фаза  –  2NH3    + 3O2 = 2HNO2 + 2H2O + 275 кДж,

II фаза  –  2HNO2 +   O2 = 2HNO3 + 87 кДж.

Постановка опыта. Для исследования процесса нитрификации готовят питательную среду Виноградского по табл. 3.

Таблица 3

Питательная среда для нитрификации

 

Состав питательной среды

Концентрация, %

Объём рабочих растворов, мл

Объём среды, мл

 

(NН4)2 SO4

К2НРО4

MgSO4

NaCl

FeSO4

CaCO3 (сухой)

 

0,2

0,1

0,05

0,2

0,04

0,5

5

5

5

5

5

0,13 г

25

 

 Питательную среду наливают в плоскодонные колбы Виноградского или Эрленмейера, заражают 0,1 г почвы, плотно закрывают ватными пробками, подписывают и помещают в термостат при температуре  25-30 ºС.

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 20:53 | Комментариев (0)
Агрономия » Ботаника и физиология растений » МИКРОБИОЛОГИЯ » Аммонификация белковых веществ

Аммонификация – это разложение органических азотсодержащих веществ с выделением азота в виде аммиака (NH3). Этот процесс называется также минерализацией азота или гниением. В почву белковые вещества попадают с остатками отмерших растений, животных, микроорганизмов, с органическими удобрениями. При аммонификации белковых веществ выделяется аммиак, углекислый газ, при анаэробном распаде могут образовываться дурнопахнущие продукты – сероводород, меркаптаны, скатол, индол, кадаверин (трупные яды).

Постановка опыта. Для выращивания аммонифицирующих бактерий используют мясопептонный бульон (МПБ) с 3 % пептона или пептонную воду. Среду разливают в маленькие пробирки с ватными пробками чуть больше, чем наполовину их объёма, добавляют немного почвы для заражения, закрепляют две индикаторные бумажки: розовую лакмусовую – индикатор на аммиак, а полоску фильтровальной бумажки, пропитанную в растворе уксуснокислого свинца – индикатор на сероводород (бумажки не должны касаться среды). Пробирки закрывают ватными пробками, плотно оборачивают пробки пергаментной бумагой, подписывают и помещают в термостат при температуре 25-30 ºС.

Элективные условия для аммонификации:

1)  обилие в среде белковых форм азота;

2)  высокий столбик среды позволяет развиваться на поверхности среды аэробам, в середине толщи среды – факультативным анаэробам, а на дне пробирки - облигатным анаэробам.

Результаты опыта. Через неделю делают выводы о продуктах, выделяемых при аммонификации белковых веществ и микроскопируют возбудителей этого процесса.

Определение аммиака и сероводорода.

Посинение розовой лакмусовой бумажки свидетельствует о выделении аммиака.

Автор: Admin | Добавлено: 28-12-2011, 20:52 | Комментариев (0)